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  • 20133-7
    scFv和載體DNA的連接

    [器材和試劑]●T4DNA連接酶及10×緩沖液(NEB)●酚/氯仿(Sigma)●100%和70%乙醇,-20℃保存●消化的載體和scFv文庫●TE(10mmol/LTrispH8,lmmol/LEDTA)[方法]1.如下所述,配制兩個100ul連接混合液,其中1個用于VH-VκscFv文庫,另1個用于Vu-VλscFv文庫,并設置兩個對照反應。對照可以確定未切的載體有多少(對照2),以及確定無插入序列時有多少重新連接的載體(對照1)。要保持恰當的比例,所獲得的克隆數(對于相...

  • 20133-7
    電感受態大腸桿菌TGl的制備

    [方法]1.將大腸桿菌TG1種到基本培養瓊脂板,37℃過夜。2.將基本培養瓊脂板上的大腸桿菌TGl再接種到含有15m12XTY培養基的100ml形瓶中。37℃振蕩培養過夜。3.用5ml夜培養的TGl接種到兩個含500m12×Y培養基的2L有擋板錐形瓶中。在搖床中培養約1.5小時,直到A600接近0.5。4.將菌液轉移4個預冷離心瓶中(約250ml/瓶)。平衡后,置于冰上20分鐘。5.以3000g,4℃離心15分鐘。使用前預冷所有轉頭。6,棄去上清,并以起始體積的冰冷lmmol...

  • 20133-5
    在微量滴定板中表達可溶性scFv

    [器材和試劑]●用于細菌培養的96孔圓底微量滴定板(Nunc,目錄號62162)●含100ug/ml氨芐青霉素和0.1%葡萄糖的2XTY培養基(2×TY/amp/0.1%glu)●含100ug/ml氨芐青霉素和3mmol/LIPTG的2XTY培養基(2×TY/amp/glu/IPTG)(參見實驗方案13.10)●噬菌體樣品[方法]1.用96孔無菌轉移設備或移液器從主板中,每孔取2ul;而后轉移至1個每孔含有100ul2×TY/amp/0.1%glu的無菌96孔微量滴定板中。2...

  • 20133-5
    用PCR識別不同的噬菌體抗體克隆

    [方法]1.配制PCR“主混合液”,每克隆20ulPCR混合液,包含:●水,15.5ul●10XRT緩沖液,2.0ul●5mmol/LdNTP,1.0ul●5,引物,1.0ul●3,引物,1.0ul●Taq聚合酶,0.2ul如果PCR緩沖液中不含Mg2+,這應加至終濃度為1.5mmol/L。也可以使用與DNA聚合酶配套供應的PCR試劑。2.取20fLl主混合液加到0.5m1管內,或加入96孔PCR微孔板孔內。3.用l根牙簽輕輕接觸單個克隆并在PCR反應液中轉動,注意不要轉移太...

  • 20133-2
    再擴增SCFvVLCDR3基因文庫

    [器材和試劑]●PCR試劑和設備●WinardPCR純化試劑盒(Promega)●定制的DNA引物●VL—NotI引物(5,—GAGTCATTCTCGACTTGCGGCCGCACCTAGCACGGTCAGCTTGGTCCCTCCGCCGAACACCCAACC—3’)●LMB3引物●用于scFv基因文庫限制性消化的試劑和設備●已擴增的scFv基因文庫DNA[方法]1.配制4個50ulPCR反應混合液,包含:●去離子水,35.5ul●20×dNTP(每種5mmol/L),2.5u...

  • 20133-2
    連接scFv和載體DNA并轉化大腸桿菌

    [器材和試劑]●去離子水(millipore)●T4DNA連接酶和10×連接酶緩沖液(NEB)●16℃水浴●消化的scFv文庫DNA●pHENlDNA,用NcoI和NotI消化(100ng/ul)●電感受態大腸桿菌TGl細胞(Strataeene)●用于將scFv文庫電轉化到大腸桿菌TGl株的試劑和設備[方法]1.配制1個50ul連接混合液,包含:●10×連接緩沖液,5uI●水,16ul●NcoI和NotI消化的pHENl(100g/ul),20ul●VcoI和NotI消化的...

  • 20132-28
    平衡法選擇高親和力噬菌體抗體

    1.多樣化的噬菌體抗體丈庫中制備噬菌體抗體。2.根據廠家說明,對抗原進行生物素化。3.選擇前,在1個1.5m1微量離心管中.用2%MPBS1m1封閉150ul鏈霉親和素磁珠,室溫1小時。用磁性試管架將碰珠吸向一側。棄去緩沖液。4.用2%MPBS封閉3個1.5m1微量離心管,室溫1小時;而后,棄去封閉緩沖液。以3個不同濃度將士物素化抗原(總共3管)與溶于2%MPDS(終濃度)的1m1噬茼體樣品(大約1012c{u/m1)進行孵育,室溫振蕩l小時。對于*輪選擇,抗原濃度應分別為K...

  • 20132-28
    用Biacore儀篩選解離速率較低的scFv

    選擇3~5輪后,隨機挑取克隆加入96孔微量滴定板中并誘導表達可溶性scFv。然后,在包被有相關抗原的96孔微量滴定板中,用ELISA分析含有可溶性scFv的細菌上清。此過程可以識別出那些結合了抗原的scFv。但即便采用上述嚴謹性選擇后,ELISA陽性克隆中僅有部分克隆的親和力比野生型高。ELISA信號強度不能很好地顯示哪個克隆具有較低的Ka值,而且更為普遍的是它與scFv表達水平相關。因此,這就需要一種篩選ELISA陽性克隆的技術,能識別出具有較低Ka值的克隆。競爭性或抑制性...

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